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Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:37:53Z

Cristinacastillo: /* Destrezas profesionales generales y atributos */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido adaptado a partir de la información aportada por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (''one-day-skills'') deberían adquirir los futuros estudiantes de Veterinaria.

==Destrezas profesionales generales y atribuciones==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de un cliente o grupo social.

4. Ser conscientes de las responsabilidades éticas y sociales que conlleva la profesión veterinaria: de la relación con el paciente y los clientes; de su relación con la sociedad y el papel desempeñado en ella. En caso de tener una especialidad clínica, ser conscientes del entorno económico y emocional en el que el veterinario desempeña su trabajo y saber responder adecuadamente.

*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:37:10Z

Cristinacastillo: /* Destrezas profesionales generales y atributos */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido adaptado a partir de la información aportada por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (''one-day-skills'') deberían adquirir los futuros estudiantes de Veterinaria.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de un cliente o grupo social.

4. Ser conscientes de las responsabilidades éticas y sociales que conlleva la profesión veterinaria: de la relación con el paciente y los clientes; de su relación con la sociedad y el papel desempeñado en ella. En caso de tener una especialidad clínica, ser conscientes del entorno económico y emocional en el que el veterinario desempeña su trabajo y saber responder adecuadamente.

*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:36:10Z

Cristinacastillo: /* Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido adaptado a partir de la información aportada por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (''one-day-skills'') deberían adquirir los futuros estudiantes de Veterinaria.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de la clientela.

4. Ser conscientes de las responsabilidades éticas y sociales que conlleva la profesión veterinaria: de la relación con el paciente y los clientes; de su relación con la sociedad y el papel desempeñado en ella. En caso de tener una especialidad clínica, ser conscientes del entorno económico y emocional en el que el veterinario desempeña su trabajo y saber responder adecuadamente.

*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:34:45Z

Cristinacastillo: /* Destrezas profesionales generales y atributos */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes, adaptándose en general a todas las disciplinas que comprenden los estudios de Veterinaria.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de la clientela.

4. Ser conscientes de las responsabilidades éticas y sociales que conlleva la profesión veterinaria: de la relación con el paciente y los clientes; de su relación con la sociedad y el papel desempeñado en ella. En caso de tener una especialidad clínica, ser conscientes del entorno económico y emocional en el que el veterinario desempeña su trabajo y saber responder adecuadamente.

*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:29:38Z

Cristinacastillo: /* Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes, adaptándose en general a todas las disciplinas que comprenden los estudios de Veterinaria.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de la clientela.

4.

*Be aware of the ethical responsibilities of the veterinary surgeon in relation to individual patient care and client relations, and also more generally in the community in relation to their possible impact on the environment and society as a whole
*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:28:49Z

Cristinacastillo: /* Destrezas profesionales generales y atributos */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:

1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).

2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para un público profano.

3. Saber trabajar eficazmente como miembro de un equipo multidisciplinar al servicio de la clientela.

4.

*Be aware of the ethical responsibilities of the veterinary surgeon in relation to individual patient care and client relations, and also more generally in the community in relation to their possible impact on the environment and society as a whole
*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:27:13Z

Cristinacastillo: /* General Professional Skills and Attributes */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes.

==Destrezas profesionales generales y atributos==

Los nuevos graduados en Veterinaria deberían ser capaces, al terminar sus estudios, de:
1. Saber comunicarse eficazmente con los clientes, con el entorno, con otros colegas de profesión y autoridades; saber escuchar y responder adecuadamente, para lo cual deberá utilizar en lenguaje (en forma y contenido) requerido para cada ocasión (considerando la audiencia y el contexto).
2. Saber elaborar historias clínicas claras y estructuradas, de manera que puedan ser entendidas y útiles para otros colegas, al tiempo que comprensibles para el p

*Prepare clear case reports and maintain patient records in a form satisfactory to colleagues and understandable by the public
*Work effectively as a member of a multi-disciplinary team in the delivery of services to clients
*Be aware of the ethical responsibilities of the veterinary surgeon in relation to individual patient care and client relations, and also more generally in the community in relation to their possible impact on the environment and society as a whole
*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''

==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:18:36Z

Cristinacastillo: /* Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes.

==General Professional Skills and Attributes==
The new veterinary graduate should be able to:
*Communicate effectively with clients, the lay public, professional colleagues and responsible authorities; listen effectively and respond sympathetically to clients and others, using language in a form appropriate to the audience and the context
*Prepare clear case reports and maintain patient records in a form satisfactory to colleagues and understandable by the public
*Work effectively as a member of a multi-disciplinary team in the delivery of services to clients
*Be aware of the ethical responsibilities of the veterinary surgeon in relation to individual patient care and client relations, and also more generally in the community in relation to their possible impact on the environment and society as a whole
*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''
==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Destrezas Adquiridas

2012-03-29T10:17:40Z

Cristinacastillo: /* RCVS Guide to essential competences required of the new Veterinary Graduate */

==Guía del RCVS (Royal College of Veterinary Surgeons) referente a las competencias esenciales a adquirir por parte de los nuevos graduados en Veterinaria==

El contenido que se va a desarrollar a continuación ha sido proporcionado por la RCVS (http://www.rcvs.org.uk/home/) y se refiere a las destrezas que desde el primer momento (one-day-skills) deberían adquirir los estudiantes, capacitándoles para:

==General Professional Skills and Attributes==
The new veterinary graduate should be able to:
*Communicate effectively with clients, the lay public, professional colleagues and responsible authorities; listen effectively and respond sympathetically to clients and others, using language in a form appropriate to the audience and the context
*Prepare clear case reports and maintain patient records in a form satisfactory to colleagues and understandable by the public
*Work effectively as a member of a multi-disciplinary team in the delivery of services to clients
*Be aware of the ethical responsibilities of the veterinary surgeon in relation to individual patient care and client relations, and also more generally in the community in relation to their possible impact on the environment and society as a whole
*Be aware of the economic and emotional climate in which the veterinary surgeon operates, and respond appropriately to the influence of such pressures
*Be willing to use one’s professional capabilities to contribute as far as possible to the advancement of veterinary knowledge in order to benefit veterinary practice and further improve the quality of animal care and public health
*Have an elementary knowledge of the organisation and management of a veterinary practice, including:
**awareness of own and employer’s responsibilities in relation to employment and health and safety legislation, and the position relating to lay staff and public liability
**awareness of how fees are calculated and invoices drawn up, and the importance of following the practice’s systems for record keeping and book-keeping, including computer records and case reports
**ability to use information technology effectively to communicate, share, collect, manipulate and analyse information
**importance of complying with professional standards and policies of the practice
*Understand the need and professional obligation for a commitment to continuing education and training, and professional development, throughout one’s professional life
*Conduct oneself in a professional manner with regard to the veterinary surgeon’s professional and legal responsibilities and understand and apply the ethical codes as set out in the RCVS Guide to Professional Conduct
*Be able to cope with uncertainty and adapt to change
*Develop a capacity for self-audit and willingness to participate in the peer-review process
*Be aware of personal limitations, and demonstrate awareness of when and from where to seek professional advice, assistance and support.
''(Commentary: This last item is considered to be one of the most important, and should guide all new veterinary graduates when undertaking their professional duties. Veterinary surgeons undertaking procedures on patients must at all stages in their careers be fully competent in their performance, or be under the close supervision of those so competent. When in doubt, the new veterinary graduate must seek professional support and in the interests of animal and human health, should not attempt to undertake complex procedures unsupervised.)''
==Underpinning Knowledge and Understanding==
The new veterinary graduate will need to have acquired a thorough knowledge and understanding of the following:
*The sciences on which the activities of veterinary surgeons are based
*Research methods and the contribution of basic and applied research to all aspects of veterinary science
*How to evaluate evidence
*The structure and functions of healthy animals, and all aspects of their husbandry
*The aetiology, pathogenesis, clinical signs, diagnosis and treatment of the common diseases and disorders that occur in the common domestic species in the UK.
*Legislation relating to the welfare (including transport) of animals and notifiable diseases
*Medicines legislation and guidelines on responsible use of medicines
*The principles of disease prevention and the promotion of health and welfare
*Veterinary public health issues including zoonoses

==Practical Competences==
The new veterinary graduate should be able to undertake the following:
*Obtain an accurate and relevant history of the individual animal or animal group, and its/their environment
*Handle and restrain an animal safely and humanely, and instruct others in performing these techniques
*Perform a complete clinical examination
*Attend all species in an emergency and perform basic first aid
''(Commentary: problems to be handled for any species include first aid management of haemorrhage, wounds, breathing difficulties, eye & ear injuries, unconsciousness, clinical deterioration, burns, tissue damage, internal organ damage and cardiac arrest. First aid to be applied includes bandaging, cleaning, immobilising limbs, resuscitation procedures, haemorrhage control.)''
*Assess correctly the nutritional status of an animal and be able to advise the client on principles of husbandry and feeding
''(Commentary: this applies to commonly presented cases and would not, for example, be expected to include advanced nutritional advice for complex cases, eg. high performance horses, high yielding diary cows, certain exotic or zoological species.)''
*Collect, preserve and transport samples, perform standard laboratory tests, and interpret the results of those generated in-house, as well as those generated by other laboratories.
''(Commentary: new graduates are expected to have a working knowledge of tests to be undertaken include conditions relating to infectious & contagious diseases; alimentary system; respiratory system; circulatory system; urinary system; nervous system; endocrine system; mucucutaneous system; musculoskeletal system; trauma; poisoning; obstetrics; paediatrics; parturition; reproduction)''
*Use radiographic, ultrasonic, and other technical equipment which can be used as a diagnostic aid, safely and in accordance with current regulations
*Follow correct procedures after diagnosing notifiable, reportable and zoonotic diseases
*Know and apply the RCVS twelve Principles of Certification correctly
*Access the appropriate sources of data on licensed medicines; prescribe and dispense medicines correctly and responsibly in accordance with relevant legislation and ensure that medicines and waste are safely stored and/or disposed of
*Correctly apply principles of sterilisation of surgical equipment
*Correctly apply principles of aseptic surgery
*Safely perform sedation, general and regional anaesthesia, implement chemical methods of restraint, and assess and control pain
*Advise on, and administer appropriate treatment
''(Commentary: the new veterinary surgeon must always seek professional advice and support if presented with a case beyond his or her immediate capability – see item A.12)''
*Recognise when euthanasia is necessary and perform it humanely, using an appropriate method, whilst showing sensitivity to the feelings of owners and others, and with due regard to the safety of those present; advise on disposal of the carcase
*Perform a basic gross post mortem examination, record details, sample tissues, store and transport them
*Perform ante mortem inspection of animals destined for the food chain and correctly identify conditions affecting the quality and safety of products of animal origin
*Assess and implement basic health and welfare records (and production records where appropriate)
*Advise on, and carry out preventive and prophylactic programmes appropriate to the species and commensurate with accepted animal health, welfare and public health standards, seeking advice and assistance where necessary from professional colleagues
*Minimise the risks of contamination, cross infection and accumulation of pathogens in the veterinary premises and in the field

==BCVA 'Day One' Skills List==
The BCVA also provide guidance on the 'day one' skills required for cattle practice at the following web address: http://www.bcva.eu/bcva/sites/default/files/Day%20One%20Skills%201.pdf

[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T10:08:55Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudado]]
#[[Trasudado Modificado]]
#[[Trasudado]]
#[[Derrames opacos: Quilo o Sangre]]

En base a esta clasificación, los parámetros físico-químicos a determinar serán: COLOR-pH-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante). Otros análisis laboratoriales ''diferenciadores'' serán las determinaciones de colesterol o triglicéridos en la muestra (cuando estemos ante un quilotórax).
El análisis microbiológico aportará información acerca de la existencia de una etiología infecciosa.
Los resultados del análisis nos darán idea del pronóstico. En gatos suele ser generalmente pobre para todas las situaciones a excepción del exudado.

1. COLOR: Un líquido contenido en una cavidad serosa es de aspecto claro o ligeramente opalescente. La presencia de células, bacterias, fibrina o lípidos incrementará la turbidez de la muestra. Un color '''rojizo''' puede ser debido a una hemorragia yatrogénica (por la centesis) o patológica. Una coloración '''blanquecina''' sugerirá la presencia de linfa.

2. pH: El pH de un líquido pleural normal es igual o superior al del pH de la sangre. Cuando encontremos rangos '''ácidos''', nos estará indicando un desorden inflamatorio. Si se encuentra en rangos '''alcalinos''' nos orienta hacia neoplasias o hemorragias.

3. CANTIDAD DE PROTEINAS. La concentración de proteínas en un líquido seroso es baja (menos de 2.5 g/dL). En casos de '''trasudado''' (hidrotórax), el derrame será pobre en proteínas (<2.5 g/dL); en casos de '''exudado''' (piotórax) la concentración será mayor de 3 g/dL. Para los '''trasudados modificados''' la concentración se sitúa entre 2.5 y 7 g/dL.

4. CONTAJE CELULAR. Un líquido seroso normal tiene baja celularidad (<5.000 céls/microL). Contajes entre 5.000 y 10.000 céls/ microL pueden o nor ser normal (habrá que tener en cuenta otros hallazgos clínicos). Contajes superiores a 10.000 céls/microL indican claramente '''inflamación'''.

5. ANALISIS CITOLOGICO. Observar el tipo celular predominante nos va a aportar información muy valiosa. Las células más frecuentes en los derrames pleurales son las '''mesoteliales''' y los '''neutrófilos'''. Otras poblaciones menos frecuentes son linfocitos y eosinófilos. Las células MESOTELIALES son redondas u ovales; cuando existe un derrame experimentan modificaciones en la forma y tamaño y que las pueden confundir con células tumorales. Por otro lado, la observación de los NEUTROFILOS, población predominante en los exudados, ayuda a diferenciar si éste es ''séptico'' o ''no-séptico''. Un '''exudado séptico''' presentará degeneración de neutrófilos, dándoles una apariencia extraña por acción de las toxinas bacterianas. Un '''exudado no-séptico''' mostrará neutrófilos de apariencia normal.

El diagnóstico diferencial para el diagnóstico de los derrames pleurales incluyen:
* Hipertensión portal
* Fallo cardíaco congestivo (más frecuente en gato)
* Peritonitis infecciosa felina (PIF)
* Traumatismos torácicos
* Hernias diafragmáticas
* Torsión de un lóbulo pulmonar
* Hipoproteinemias severas (de origen hepático, intestinal o renal)
* Neoplasias (carcinomas pulmonares o bronquiales, leucemia felina...)

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T09:56:28Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudado]]
#[[Trasudado Modificado]]
#[[Trasudado]]
#[[Derrames opacos: Quilo o Sangre]]

En base a esta clasificación, los parámetros físico-químicos a determinar serán: COLOR-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante). Otros análisis laboratoriales ''diferenciadores'' serán las determinaciones de colesterol o triglicéridos en la muestra (cuando estemos ante un quilotórax).
El análisis microbiológico aportará información acerca de la existencia de una etiología infecciosa.
Los resultados del análisis nos darán idea del pronóstico. En gatos suele ser generalmente pobre para todas las situaciones a excepción del exudado.

1. COLOR: Un líquido contenido en una cavidad serosa es de aspecto claro o ligeramente opalescente. La presencia de células, bacterias, fibrina o lípidos incrementará la turbidez de la muestra. Un color '''rojizo''' puede ser debido a una hemorragia yatrogénica (por la centesis) o patológica. Una coloración '''blanquecina''' sugerirá la presencia de linfa.

2. CANTIDAD DE PROTEINAS. La concentración de proteínas en un líquido seroso es baja (menos de 2.5 g/dL). En casos de '''trasudado''' (hidrotórax), el derrame será pobre en proteínas (<2.5 g/dL); en casos de '''exudado''' (piotórax) la concentración será mayor de 3 g/dL. Para los '''trasudados modificados''' la concentración se sitúa entre 2.5 y 7 g/dL.

3. CONTAJE CELULAR. Un líquido seroso normal tiene baja celularidad (<5.000 céls/microL). Contajes entre 5.000 y 10.000 céls/ microL pueden o nor ser normal (habrá que tener en cuenta otros hallazgos clínicos). Contajes superiores a 10.000 céls/microL indican claramente '''inflamación'''.

4. ANALISIS CITOLOGICO. Observar el tipo celular predominante nos va a aportar información muy valiosa. Las células más frecuentes en los derrames pleurales son las '''mesoteliales''' y los '''neutrófilos'''. Otras poblaciones menos frecuentes son linfocitos y eosinófilos. Las células MESOTELIALES son redondas u ovales; cuando existe un derrame experimentan modificaciones en la forma y tamaño y que las pueden confundir con células tumorales. Por otro lado, la observación de los NEUTROFILOS, población predominante en los exudados, ayuda a diferenciar si éste es ''séptico'' o ''no-séptico''. Un '''exudado séptico''' presentará degeneración de neutrófilos, dándoles una apariencia extraña por acción de las toxinas bacterianas. Un '''exudado no-séptico''' mostrará neutrófilos de apariencia normal.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T09:45:23Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudado]]
#[[Trasudado Modificado]]
#[[Trasudado]]
#[[Derrames opacos: Quilo o Sangre]]

En base a esta clasificación, los parámetros físico-químicos a determinar serán: COLOR-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante). Otros análisis laboratoriales ''diferenciadores'' serán las determinaciones de colesterol o triglicéridos en la muestra (cuando estemos ante un quilotórax).
El análisis microbiológico aportará información acerca de la existencia de una etiología infecciosa.
Los resultados del análisis nos darán idea del pronóstico. En gatos suele ser generalmente pobre para todas las situaciones a excepción del exudado (pitórax).

1. COLOR: Un líquido contenido en una cavidad serosa es de aspecto claro o ligeramente opalescente. La presencia de células, bacterias, fibrina o lípidos incrementará la turbidez de la muestra. Un color '''rojizo''' puede ser debido a una hemorragia yatrogénica (por la centesis) o patológica. Una coloración '''blanquecina''' sugerirá la presencia de linfa.

2. CANTIDAD DE PROTEINAS. La concentración de proteínas en un líquido seroso es baja (menos de 2.5 g/dL). En casos de '''trasudado''' (hidrotórax), el derrame será pobre en proteínas (<2.5 g/dL); en casos de '''exudado''' (piotórax) la concentración será mayor de 3 g/dL. Para los '''trasudados modificados''' la concentración se sitúa entre 2.5 y 7 g/dL.

3. CONTAJE CELULAR. Un líquido seroso normal tiene baja celularidad (<5.000 céls/

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:56:45Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudado]]
#[[Trasudado Modificado]]
#[[Trasudado]]
#[[Derrames opacos: Quilo o Sangre]]

En base a esta clasificación, los parámetros físico-químicos a determinar serán: COLOR-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante). Otros análisis laboratoriales ''diferenciadores'' serán las determinaciones de colesterol o triglicéridos en la muestra (cuando estemos ante un quilotórax).
El análisis microbiológico aportará información acerca de la existencia de una etiología infecciosa.
Los rsultados del análisis nos darán idea del pronóstico. En gatos suele ser generalmente pobre para todas las situaciones a excepción del exudado (poitórax)

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:51:42Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudado]]
#[[Trasudado Modificado]]
#[[Trasudado]]
#[[Derrames opacos: Quilo o Sangre]]

Los parámetros a determinar en una muestra de derrame son: COLOR-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante).
Otros análisis que pueden realizarse

The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:50:22Z

Cristinacastillo: /* Análisis del líquido pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.
Antes de abordar los análisis más adecuados, hemos de tener en cuenta los tipos de derrame que nos podemos encontrar en el espacio pleural:
#[[Exudaddo]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

Los parámetros a determinar en una muestra de derrame son: COLOR-CANTIDAD DE PROTEINAS-CONTAJE CELULAR-CITOLOGÍA (evaluación de la forma celular predominante).
Otros análisis que pueden realizarse

The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:46:31Z

Cristinacastillo: /* Pleural Fluid Analysis */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Análisis del líquido pleural===
El análisis laboratorial de una muestra del derrame nos permitirá determinar la causa del mismo, así como desarrollar el plan terapéutico más adecuado.

The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:45:08Z

Cristinacastillo: /* Complicaciones */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico. Ver [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:44:40Z

Cristinacastillo: /* Complications */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complicaciones==
Desarrollo de un neumotórax yatrogénico[[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:43:27Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados (con el fin de crear un '''efecto sellado'''), '''por el borde craneal''' de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural y aspiramos líquido mientras avanzamos con la aguja con el bisel de la misma mirando hacia dentro, al tiempo que ésta se ''orientar'' hacia la pared costal para evitar cualquier laceración en la superficie pulmonar. Aspiramos con suavidad el fluido.
Si no obtenemos nada al primer intento pero el cuadro sugiere una derrame pleural/neumotórax, debemos volver a realizar la toracocentesis en otras localizaciones.

La extracción del derrame/aire debería suponer una mejora en la sintomatología del animal.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:29:36Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo (siempre bilateral) se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados, por el borde craneal de la costilla implicada para evitar los vasos y nervios que circulan por el borde caudal de la costilla adyacente. Una vez introducida la hacemos avanzar hacia el espacio pleural.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:27:36Z

Cristinacastillo: /* Introducción */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. Para ellos está indicado en primer
lugar realizar la toracocentesis y aplicar oxigenoterapia; esto les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo (siempre bilateral) se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados, haciéndola avanzar hacia el espacio pleural.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-29T08:13:10Z

Cristinacastillo: /* Introducción */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. Cuando exista duda, y siempre que el animal no presente un cuadro disneico severo, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo (siempre bilateral) se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados, haciéndola avanzar hacia el espacio pleural.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T12:13:00Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. En caso de duda, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
Eso siempre que el animal no acuda en situaciones de urgencia. En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==
El lugar de elección es el espacio comprendido entre el 7 y 8 espacio intercostal. En caso de sospechar la presencia de derrame (que se puede confirmar por la presencia de una ''linea de matidez'' a la percusión), deberemos de insertar la aguja en el tercio más ventral del tórax. En caso de sospechar de neumotórax (sonido hipersonoro a la percusión), la aguja se insertará en el tercio más dorsal. Puede ser necesario en empleo de anestesis local.

Tras rasurar y desinfectar la zona de trabajo (siempre bilateral) se introduce la aguja lentamente con un angulo de 45 grados, haciéndola avanzar hacia el espacio pleural.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T12:07:36Z

Cristinacastillo: /* Procedure */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. En caso de duda, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
Eso siempre que el animal no acuda en situaciones de urgencia. En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Metodología==

The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T11:57:19Z

Cristinacastillo: /* Material */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. En caso de duda, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
Eso siempre que el animal no acuda en situaciones de urgencia. En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles
* Aguja palometa con catéter incorporado, o en su defecto, una aguja estéril (del menor calibre posible) al que podamos incorporar un tubo de drenaje estéril.
* Jeringa estéril de 20 mL.
* Si sospechamos de la existencia de grandes volúmenes en el espacio pleural, puede ser recomendable disponer de una llave de 3 vías; de esta manera podremos extraer más de una jeringa de forma segura y manteniendo el sistema cerrado.
* Material de recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

No se recomienda la sedación, especialmente si el animal está disneico (no obstante se han descrito situaciones en las que el animal ha tenido que ser sedado ante el grado de excitación y estrés presente). Si se recomienda que el animal, previo a la punción, se coloque unos minutos en una cámara de oxígeno, con el fin mejorar su capacidad ventilatoria.

Lo que es importante es un buen manejo y sujección del animal, desarrollando el procedimiento en un ambiente lo más tranquilo posible.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T11:46:07Z

Cristinacastillo: /* Equipment */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. En caso de duda, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
Eso siempre que el animal no acuda en situaciones de urgencia. En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Material===
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Ecógrafo (si se dispone) para hacer una punción eco-guiada
* Guantes estériles

* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T11:41:21Z

Cristinacastillo: /* Introducción */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, y en caso de derrame proporcionará una muestra para su análisis. En caso de duda, la radiología (mínimo dos proyecciones -lateral y dorsoventral-) o la ecografía pueden servir de ayuda.
Eso siempre que el animal no acuda en situaciones de urgencia. En situaciones de disnea, la inestabilidad del individuo y su propia ansiedad, no hacen viable este tipo de exploraciones, siendo necesario actuar con rapidez. En tales casos, la mera punción en tórax, aparte de proporcionar muestra para su análisis, les ayuda a liberar presión y a calmarlos, mejorando los signos clínicos.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-27T11:34:06Z

Cristinacastillo: /* Small Animal Thoracocentesis */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Toracocentesis en pequeños animales==

===Introducción===
Como en grandes animales, la toracocentesis es un procedimiento con valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando la historia clínica del animal muestre signos, mediante la auscultación y percusión, de que el espacio pleural está '''ocupado''', la punción en tórax ayudará a confirmarlo, así como proporcionará una muestra para su análisis en caso de derrame.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T12:20:57Z

Cristinacastillo: /* References */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]

Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

Orsini, JA; Divers, T.J. (2008) '''Equine emergencies. Treatment and procedures.''' ''3rd. ed.'' Saunders Elsevier

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T12:08:22Z

Cristinacastillo: /* Análisis del derrame pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL) han de considerarse siempre hallazgos patológicos.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T12:07:20Z

Cristinacastillo: /* Análisis del derrame pleural */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Ayuda a determinar la causa del proceso que ha conducido al derrame así como a establecer el plan terapéutico.
En condiciones normales el líquido pleural es escaso (1-2 ml), de color ambarino, bajo contenido celular (< 5.000 células nucleadas/microL) y proteico (<2.5 g/dL)

Cambios en la coloración (amarillo, rojizo, lechoso), en el contenido celular (>10.000 células nucleadas/L) o proteico (>3.5 d/dL)

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/microL''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T12:00:27Z

Cristinacastillo: /* Complicaciones */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''').
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T12:00:13Z

Cristinacastillo: /* Complicaciones */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico'' (ver '''[[pneumothorax]]''')
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:59:46Z

Cristinacastillo: /* Complicaciones */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

''Neumotórax yatrogénico''. Ver '''[[pneumothorax]]'''
''Hemotórax'', por punción de una vena o arteria de gran tamaño al insertar la cánula. Se evita penetrando siempre por el borde craneal de las costillas.
''Arritmias cardíacas'', por punción accidental del corazón. Se evita no puncionando en el área craneal/ventral del tórax o usando punción eco-guiada.
''Hipovolemia'', por extracción de grandes volúmenes de líquido (10-20 litros) y de forma muy rápida. Se minimiza con fluidoterapia.

===Análisis del derrame pleural===

Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:55:13Z

Cristinacastillo: /* Pleural Fluid Analysis */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

Neumotórax yatrogénico. Ver '''[[pneumothorax]]'''

===Análisis del derrame pleural===

Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:54:06Z

Cristinacastillo: /* Complicaciones */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

Neumotórax yatrogénico. Ver '''[[pneumothorax]]'''

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:53:51Z

Cristinacastillo: /* Complications */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complicaciones===

Neumotórax yatrogénico. Ver'''[[pneumothorax]]'''

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:53:01Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula en la incisión y se presiona de forma moderada para que avance a través del músculo intercostal. Se percibe una pérdida repentina de tensión cuando entra en el espacio pleural, tras superar la pleura parietal. Este proceso puede ser muy molesto para el animal en caso de que la anestesia local no haya sido buena.
Una vez dentro de la cavidad, se acopla una jeringa a la llave de tres vías o al tubo. Si existe derrame se obtendrá líquido al aspirar. Si sale líquido espontáneamente puede recogerse en un cubo. Suele ser necesario rotar o redirigir la cánula. El tubo o la llave de tres vías debe mantenerse cerrado cuando no se evacúe líquido para evitar la entrada de aire y el neumotórax yatrogénico.
Cuando ya no se obtenga más líquido se sutura alrededor de la cánula con puntos en bolsa de tabaco y se cierra con nudo mientras se retira la cánula.
Si se ha obtenido un líquido séptico, es recomendable aplicar antibioterapia en el interior y periferia de la incisión, vendando la herida.

===Complications===
Iatrogenic '''[[pneumothorax]]'''

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:44:20Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Also known as: '''''Pleurocentesis'''''

==Toracocentesis en caballos==
===Introducción===
La toracocentesis es la técnica que permite la extracción de líquido (derrame) o aire acumulados en el espacio pleural y que interfieren en la correcta función respiratoria.
Para ello se requiere el uso de un catéter o cánula introducidos percutáneamente en la cavidad torácica y hacia el espacio pleural. La toracocentesis, en situaciones de derrame pleural, constituye una herramienta de gran valor diagnóstico y terapéutico.

Cuando los datos obtenidos a la auscultación y percusión nos sugieran la presencia de derrame pleural, la punción en tórax tendrá varios objetivos: 1) '''Confirmar la presencia''' del derrame; 2) Aportar muestras para el '''análisis laboratorial''' con el que poder obtener información acerca de su etiología y el plan terapéutico a adoptar; y 3) '''Aliviar la presión''' causada por la presencia del derrame y que, indudablemente afecta a la función respiratoria.

En ocasiones, al realizar la punción, el animal muestra signos de malestar cuando se le retiran grandes cantidades de derrame. Esto es así por ''el efecto compensatorio'' que su presencia ha causado sobre la función pulmonar durante el tiempo de permanencia. A pesar de ello, la toracocentesis mitigará la disnea existente al liberar al espacio pleural del material contenido en él. La colocación de drenajes torácicos tras la punción puede ser necesario, cuando las cantidades de líquido sean elevadas o se sospeche de neoplasia.

===Material necesario===
* Buena sujección mediante potro o torcedor. Suele ser necesaria la sedación, en caso de intranquilidad. Vigilar no obstante la función respiratoria.
* Peladoras y material necesario para realizar la limpieza y desinfección quirúrgica de la zona (torundas, gasas, povidona yodada, clorhexidina, etc.)
* Écógrafo (si se dispone) para realizar la punción eco-guiada
* Anestésico local y jeringa de 3 cm y calibre 23G
* Guantes estériles
* Aguja de bisturí
* Cánula intramamaria metálica estéril (6-10 cm de longitud) o catéter urinario metálico (26 cm). Las posibles laceraciones del pulmón son menos frecuentes si se emplean cánulas de punta roma.
* Llave de 3 vías y tubos de toracocentesis y drenaje (equipo infusor)
* Tubos para recogida de muestras: 1) Tubo con EDTA; 2) Tubo sin anticoagulante; y 3) Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)

===Metodología===

El lugar apropiado para la punción se establece teniendo en cuenta algunas referencias anatómicas: '''7-8 espacio intercostal por el lado izquierdo''', o '''6-7 espacio intercostal por el lado derecho'''. A qué altura lo haremos dependerá de si el espacio pleural contiene aire o líquido; ello determinará diferencias en la percusión del campo pulmonar. Cuando hay aire (neumotórax) éste acumula en la zona dorsal y notaremos un sonido hipersonoro; por el contrario si hay líquido, éste se acumulará en las zonas ventrales y obtendremos una línea/zona de matidez.
Una vez fijado el espacio y la altura, hay que tener en cuenta que los '''vasos y nervios discurren por el borde caudal''' de cada costilla, por lo cual la '''punción deberá realizarse en el borde craneal''' de la costilla para evitar el daño de las estructuras antes mencionadas.

Cuando se detecte la presencia de derrame bilateral, es interesante realizar la punción an ambos lados (en los caballos sanos suele existir comunicación de ambos hemitórax, sin embargo en casos de pleuroneumonía esta comunicación puede desaparecer y por lo tanto podemos tener 2 líquidos con diferentes características, Aguilera et al., 2009). Para una identificación más precisa del punto de punción puede emplearse el ecógrafo.

Una vez el animal sujeto (sedado en caso de necesidad), y la zona de punción desinfectada y acondicionada quirúrgicamente, se aplica anestesia local y que abarque la zona subcutánea, musculatura intercostal y pleura parietal '''[[ver Local anaesthetic]]''' para lo cual se empleará una aguja de 3 cm y 23 g de calibre.
A continuación se realiza una incisión corta y profunda a través de la piel y la fascia en la piel, mediante una aguja de bisturí. Previamente, y con los guantes estériles habremos acoplado a la cánula o catéter la llave de tres vías o el tubo de drenaje con el extremo pinzado para evitar un neumotórax si hay presión negativa en la cavidad torácica.
Se inserta la cánula

A '''stab incision''' using a number 15 scalpel blade should be made through the skin. Prior to inserting the cannula, a '''three-way tap''' and extension set should be attached to it. Using moderate pressure, the cannula should be pushed through first the intercostal muscles and secondly through the parietal pleura in order to enter the thoracic cavity. Passage of the cannula through the parietal pleura is extremely painful to the horse if the area has not been fully desensitised by the local anaesthetic. A release in pressure should be felt when the cannula enters the thoracic cavity. The cannula can be manipulated and moved to collect as much fluid as possible.

===Complications===
Iatrogenic '''[[pneumothorax]]'''

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.

Pleural fluid in healthy horses normally contains '''less than 5,000 nucleated cells/l''' and '''less than 25g/l total protein'''. Levels greater than 10,000 nucleated cells/l and 35g/l total protein should be considered abnormal.

==Small Animal Thoracocentesis==

===Introduction===
Thoracocentesis is a procedure which has both diagnostic and therapeutic value.

When the '''clinical history''', '''presenting signs''', '''thoracic auscultation''' and '''percussion''' of the animal suggest a pleural effusion, thoracocentesis can both '''confirm''' its presence and provide a '''specimen''' for '''examination'''. Ideally '''radiography''' (minimum of two views - lateral and dorsoventral) or '''ultrasound''' should be performed to confirm pleural space disease prior to thoracocentesis. However it can be particularly useful in the emergency patient (the dyspnoeic cat in particular) who is too unstable to undergo radiography or similar diagnostic tests as drainage of pleural fluid will both provide a preliminary diagnosis and improve clinical signs.

===Equipment===
* Clippers and materials to perform a surgical scrub
* Ultrasonography if available
* Sterile gloves
* Butterfly needle with incorporated extension set or sterile needle (1 inch with the smallest possible gauge) with extension set
* 20ml sterile syringe
* 3-way tap - if large volumes of fluid are anticipated, as this allows for multiple syringes of fluid to be removed safely under a closed system
* EDTA tube for cytology and plain tube for biochemistry and culture

Sedation is not generally required, especially in the dyspnoeic patient (however it can be used if necessary to prevent further stress to an excitable animal). The patient should be '''handled gently''' and the procedure performed in a '''quiet environment'''. It may be necessary to place the animal in an '''oxygen cage''' prior to the procedure as they often have a poor oxygen reserve.

==Procedure==
The site for thoracocentesis is between the '''7th and 8th intercostal space'''. If fluid is suspected in the pleural space then the needle should be inserted '''2/3rds of the way down the chest'''. If '''pneumothorax''' is suspected then the needle should be inserted more '''dorsally''', approximately '''1/3rd of the way down the chest'''. Local anaesthetic can be used if necessary.

Clip and scrub a generous area around the '''7-8th rib space''' on both sides of the chest. Advance the needle slowly at a '''45 degree angle''' in the middle of the 7th or 8th intercostal space into the pleural space. A small amount of '''negative pressure''' should be applied as the needle passes through the thoracic wall. The needle should be angled downward, '''parallel to the body wall'''. The fluid or air should then be aspirated. The needle may need redirecting to access pockets of fluid.

Up to 100mls of fluid per side can be expected in the cat. '''Removal of fluid should see an improvement in clinical signs'''.

==Complications==
Iatrogenic [[pneumothorax]]

===Pleural Fluid Analysis===
Analysis of the pleural fluid may in turn help you to determine the underlying disease process and develop a therapeutic plan.
The following can be analysed: '''cytology, total cell count, differential cell count, total protein, bacterial culture ans sensitivity, gram stain and triglyceride and cholesterol levels''' (if [[Chylothorax|chylothorax]] is suspected).

The types of fluid that may cause pleural space disease are:
#[[Exudate]]
#[[Modified Transudate]]
#[[Transudate]]
#[[Chylous Effusion|Chyle]]

These can be identified by the protein and cellular content of the sample.

The fluid can give an indication of '''prognosis'''; in the cat prognosis is generally poor for all diagnoses except [[Pyothorax|pyothorax]] (an exudate with degenerate [[neutrophils]] and intracellular bacteria). Therefore it is often useful to perform in-house cytology to give a preliminary diagnosis, which allows the owners to make an informed decision before proceeding with further treatment. Differential diagnosis in the cat include [[Heart Failure|congestive heart failure]], [[Feline Infectious Peritonitis|FIP]], [[Pyothorax|pyothorax]], [[Neoplasia - Pathology|neoplasia]], [[Haemothorax|haemothorax]] and [[Chylothorax|chylothorax]]. ''It should be noted that any pleural effusion may produce bizarre [[mesothelial cells]] which could be mistaken for neoplastic cells.''

{{Learning
|flashcards = [[Equine Internal Medicine Q&A 18]] [[Equine Internal Medicine Q&A 19]] [[Cytology Q&A 03]] [[Small Animal Emergency and Critical Care Medicine Q&A 03]]
}}

==References==

[http://www.veterinaria.org/revistas/redvet%20-%20http://revista.veterinaria.org http://www.veterinaria.org/revistas/redvet - http://revista.veterinaria.org]
Adamantos, S (2011) '''Feline Respiratory Emergencies''' RVC Emergency Medicine and Critical Care Elective, ''Royal Veterinary College''

Mair, TS & Divers, TJ (1997) '''Self-Assessment Colour Review Equine Internal Medicine''' ''Manson Publishing Ltd''

RVC staff (2009) '''Respiratory System''' RVC Intergrated BVetMed Course, ''Royal Veterinary College''

Rutgers, C H (1989) '''Thoracocentisis in the dog and cat''' ''In Practice'' 1989 11: 14-1

Copas, V (2011) '''Diagnosis and treatment of equine pleuropneumonia''' ''In Practice'' 2011;33:155-162

RVC staff (2011) '''A logical approach to clinical problem solving''' RVC Feline Medicine Elective, ''Royal Veterinary College''

{{review}}
[[Categoría:Clinical Techniques]]
[[Categoría:Cristina Castillo]]

Toracocentesis

2012-03-16T11:32:34Z

Cristinacastillo: /* Material necesario */

Toracocentesis

2012-03-16T11:29:09Z

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Toracocentesis

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Toracocentesis

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Toracocentesis

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Toracocentesis

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Toracocentesis

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Cristinacastillo: /* Material necesario */

Toracocentesis

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Cristinacastillo: /* Metodología */

Toracocentesis

2012-03-16T11:13:13Z

Cristinacastillo: /* Metodología */

Toracocentesis

2012-03-16T11:07:13Z

Cristinacastillo: /* Pleural Fluid Analysis */

Toracocentesis

2012-03-16T11:06:51Z

Cristinacastillo: /* References */