Diferencia entre revisiones de «Abdominocentesis»

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==Material==
 
==Material==
* Buena sujección mediante potro, torcedor o contención manual, y sedación en caso de ser necesario
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* Twitch and sedation if necessary
* Peladora y material necesario para una buena limpieza y desinfección del área (torundas o gasas, clorhexidina, povidona yodada)
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* Clippers and material for a sterile scrub
* Ecógrafo, en caso de disponer de él, para hacer la punción eco-guiada
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* Ultrasonography if it is available
* Guantes estériles
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* Sterile Gloves
* Jeringas estériles de calibre 18 a 20g. Puede ser necesario una aguja de bisturí en caso de utilizar una cánula mamaria.
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* Sterile 18-gauge to 22-gauge, 1 1/2-inch needles (a #15 scalpel blade is required if using a teat cannlua)
* Anestésico local en jeringa con aguja fina (en caso de usar bisturí)
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* Sterile syringe
* Jeringuilla estéril
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* Sterile gauze
* Tubos de recogida de muestras: 1)Tubo con EDTA; 2)Tubo sin anticoagulante; y 3)Viales estériles para cultivos bacterianos (hisopos, placas de petri, etc.)
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* EDTA tube
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* Plain tube
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* Sterile vial for culture
  
==Metodología==
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==Procedure==
El mejor sitio para la punción es la parte más ventral del abdomen, en la línea media, y aproximadamente 5 cm. caudal al apéndice xifoides.  
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The best site for abdominocentesis is the most dependent part of the abdomen, midline and usually around 5 cm caudal to the xiphoid. The use of ultrasound for selecting the pockets of peritoneal fluid within the abdomen is ideal as it not only indicates how thick the body wall is but the location of viscera to be avoided. However, peritoneal fluid can still be extracted even if it is not apparent on ultrasound. A right paramedian approach at the most dependent area of the abdomen is the best site if ultrasound is not available. This approach should avoid accidental puncture of the spleen. The selected area should be generously clipped and a sterile scrub performed. At minimum a twitch, or sedation if the horse is more fractious, should be used for restraint. Sterile gloves should be worn to maintain sterility. The veterinarian should stand next to the horse and insert the needle with a quick action through the skin. Then the needle can be gently and carefuly advanced through the linea alba, into the peritoneal cavity. If fluid is present, then drops should be seen in the needle hub. If this is not the case, reposition and twist the needle. Alternatively, a sterile syringe can be attatched and the fluid can be aspirated. Once the fluid is noted, it should be allowed to drop freely into the EDTA and plain tubes for analysis. The fluid may also be submitted for microbiological culture and sensitivity, peritoneal lactate and glucose concentrations if necessary.  
El uso del ecógrafo en la abdominocentesis tiene varias ventajas: 1) permite ubicar con exactitud la zona de mayor acúmulo de líquido y por tanto, la más adecuada para la punción; 2) orienta acerca del grosor de la pared abdominal; y 3) ayuda e evitar la punción del bazo.  
 
Aún así, es posible extraer líquido peritoneal sin necesidad de ecografía. En este caso se recomienda siempre abordar el abdomen desde el lado derecho (tras asegurarse de que no hay esplenomegalia hacia este lado).  
 
El animal ha de estar debidamente sujeto, y en caso de ser necesario, sedado.  
 
La zona de trabajo se ha de rasurar y desinfectar quirúrgicamente.  
 
El clínico aborda el abdomen desde el lado derecho y mirando hacia la cola. Si bien ha de trabajar agachado, nunca deberá meter la cabeza bajo el abdomen.
 
Usando guantes estériles, se inserta la aguja a través de la piel con un movimiento rápido. Se recomienda evitar puntos con venas superficiales para minimizar el riesgo de contaminación por sangre.  
 
Una vez hecho, se dirige la aguja, a través de la línea alba, hacia la cavidad peritoneal. En caso de haber derrame, se notará la presencia de gotas cayendo del cono de la aguja. De no ser así, se rota y reorienta antes de avanzar. Puede conectarse la jeringa y aspirar, para ayudar a la extracción.
 
Una vez que hemos obtenido un flujo continuo de líquido, se retira la jeringa y se deja que caiga líbremente en los diferentes tubos de recogida. Estos se destinarán al análisis microbiológico, citológico, así como a la determinación de los niveles de lactato y glucosa contenidos en el derrame.
 
  
==Complicaciones==
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==Complications==
La punción accidental del bazo contaminará la muestra, dificultando su análisis. Tendrá aspecto sanguinolento y un valor hematócrito superior al de la sangre periférica. La punción accidental del intestino y de su contenido puede ser también habitual. En este caso aparecerá un líquido de color verdoso, turbio y que contiene partículas alimentarias. Si bien no genera complicaciones, este riesgo puede minimizarse mediante el empleo de cánulas romas.
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Accidental splenic puncture will contaminate the sample and make analysis difficult. The fluid will be blood-tinged and have a PCV greater than that of the peripheral blood. Accidental puncture and aspiration of the bowel and its contents commonly occurs but does not often cause complications. The risk of this can be minimized using a blunt-tipped cannula. The risk of both scenarios can be minimized by the use of ultrasound guidance. If sterility is broken during the procedure or purulent and septic fluid is removed then there is a risk of cellulitis and abscess formation in the body wall.
Todos estos riesgos se evitan con el uso del ecógrafo.
 
Si durante el proceso se alteran las condiciones de esterilidad, o se extrae exudado (séptico o no séptico), puede existir el riesgo de que se genere celulitis o desarrollen abscesos en la pared abdominal.
 
  
==Análisis del líquido peritoneal==
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==Peritoneal Fluid Analysis==
Para conocer los valores propios del líquido peritoneal normal y patológico, mira [[Colic - Peritoneal Fluid Analysis|analisis del líquido peritoneal en caballos]].
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For normal and abnormal peritoneal fluid analysis, see [[Colic - Peritoneal Fluid Analysis|peritoneal fluid analysis in horses]].
  
 
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===References===
===Bibliografía===
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* Edwards B. (2009), Diagnosis and Pathophysiology of Intestinal Obstruction, in Equine Gastroenterology courtesy of the University of Liverpool, pp 8-9
* Cesarini Latorre C, Cómo realizar una abdominocentesis. Disponible en:[http://Como%20realizar%20una%20abdominocentesis minnie.uab.es/~veteri/21231/Abdominocentesis.pdf]Fecha de acceso: 9 de marzo de 2012.
 
* Edwards B. (2009), Diagnosis and Pathophysiology of Intestinal Obstruction, in Equine Gastroenterology courtesy of the University of Liverpool, pp 8-9
 
 
* Meuller E, Moore J. N, (2008) Classification and Pathophysiology of Colic, Gastrointestinal Emergencies and Other Causes of Colic, in Equine Emergencies- Treatments and Procedures, 3rd Edition, Eds Orsini J. A, Divers T.J, Saunders Elsevier, pp 102 - 105, 111
 
* Meuller E, Moore J. N, (2008) Classification and Pathophysiology of Colic, Gastrointestinal Emergencies and Other Causes of Colic, in Equine Emergencies- Treatments and Procedures, 3rd Edition, Eds Orsini J. A, Divers T.J, Saunders Elsevier, pp 102 - 105, 111
  
  
 
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Revisión del 16:10 9 mar 2012

Introducción

La extracción y análisis del líquido peritoneal del caballo es útil en la valoración del estado del paquete intestinal. La abdominocentesis se convierte así en una herramienta diagnóstica útil para decidir si un paciente con cólico es o no intervenido quirúrgicamente. Debe practicarse siempre que estemos ante situaciones de cólicos recurrentes o persistentes; también en situaciones de pérdidas de peso crónicas y diarreas. Se recomienda realizar en instalaciones clínicas bien comunicadas ante la posibilidad de que el análisis recomiende referir al animal urgentemente para su intervención. Para acceder al análisis del líquido peritoneal en caballos accede aquí.

Material

  • Twitch and sedation if necessary
  • Clippers and material for a sterile scrub
  • Ultrasonography if it is available
  • Sterile Gloves
  • Sterile 18-gauge to 22-gauge, 1 1/2-inch needles (a #15 scalpel blade is required if using a teat cannlua)
  • Sterile syringe
  • Sterile gauze
  • EDTA tube
  • Plain tube
  • Sterile vial for culture

Procedure

The best site for abdominocentesis is the most dependent part of the abdomen, midline and usually around 5 cm caudal to the xiphoid. The use of ultrasound for selecting the pockets of peritoneal fluid within the abdomen is ideal as it not only indicates how thick the body wall is but the location of viscera to be avoided. However, peritoneal fluid can still be extracted even if it is not apparent on ultrasound. A right paramedian approach at the most dependent area of the abdomen is the best site if ultrasound is not available. This approach should avoid accidental puncture of the spleen. The selected area should be generously clipped and a sterile scrub performed. At minimum a twitch, or sedation if the horse is more fractious, should be used for restraint. Sterile gloves should be worn to maintain sterility. The veterinarian should stand next to the horse and insert the needle with a quick action through the skin. Then the needle can be gently and carefuly advanced through the linea alba, into the peritoneal cavity. If fluid is present, then drops should be seen in the needle hub. If this is not the case, reposition and twist the needle. Alternatively, a sterile syringe can be attatched and the fluid can be aspirated. Once the fluid is noted, it should be allowed to drop freely into the EDTA and plain tubes for analysis. The fluid may also be submitted for microbiological culture and sensitivity, peritoneal lactate and glucose concentrations if necessary.

Complications

Accidental splenic puncture will contaminate the sample and make analysis difficult. The fluid will be blood-tinged and have a PCV greater than that of the peripheral blood. Accidental puncture and aspiration of the bowel and its contents commonly occurs but does not often cause complications. The risk of this can be minimized using a blunt-tipped cannula. The risk of both scenarios can be minimized by the use of ultrasound guidance. If sterility is broken during the procedure or purulent and septic fluid is removed then there is a risk of cellulitis and abscess formation in the body wall.

Peritoneal Fluid Analysis

For normal and abnormal peritoneal fluid analysis, see peritoneal fluid analysis in horses.

References

  • Edwards B. (2009), Diagnosis and Pathophysiology of Intestinal Obstruction, in Equine Gastroenterology courtesy of the University of Liverpool, pp 8-9
  • Meuller E, Moore J. N, (2008) Classification and Pathophysiology of Colic, Gastrointestinal Emergencies and Other Causes of Colic, in Equine Emergencies- Treatments and Procedures, 3rd Edition, Eds Orsini J. A, Divers T.J, Saunders Elsevier, pp 102 - 105, 111