Diferencia entre revisiones de «Herpesvirus Bovino 1»
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| − | En el laboratorio se puede aislar el virus | + | En el laboratorio, se puede aislar el virus de hisopos nasales o vaginales, o de tejido triturado. El ADN de Herpesvirus Bovino-1 de también puede ser detectado por '''reacción en cadena de la polimerasa (PCR)'''. En un animal individual, '''técnicas serológicas de pares''' puede ser útil con una respuesta de anticuerpo visto dos semanas después de los signos clínicos. |
| − | + | También se ha desarrollado ELISAs para detectar anticuerpos contra el Herpesvirus Bovino-1 en '''la leche a granel''', o en muestras de leche de vacas individuales. ELISAs de leche funcionan bien en comparación con el estándar ELISA de suero. | |
| − | + | En los programas de control de la rinotraqueitis infecciosa bovina (IBR), el diagnóstico serológico tiene como objetivo identificar los animales con una infección latente. Sin embargo, algunos animales son portadores seronegativos latentes (SNLC), es decir, están infectadas de forma latente con el Herpesvirus Bovino-1 sin anticuerpos detectables.<ref>Lemaire, M., Meyer, G., Baranowski, E., Schynts, F., Wellemans, G., Kerkhofs, P., Thiry, E (2000) '''Effects of bovine herpesvirus type 1 infection in calves with maternal antibodies on immune response and virus latency'''. ''J Clin Microbiol'', 38:1885-1894</ref> | |
== Tratamiento == | == Tratamiento == | ||
Revisión del 19:35 13 sep 2011
Tambien conocido como: BHV -1 — Herpesvirus Encefálico Bovino Tipo 5 o Tipo 1 infección en Bovídos — Rinotraqueitis Bovino Infeccioso — Vulvovaginitis Pustular Infecciosa — Balanopostitis Pustular Infeccioso — IPB Tipo de encefalitis por herpesvirus bovino 5 o infección en el ganado bovino de tipo 1
Introducción
Herpesvirus Bovino 1, produce tres enfermedades; Rinotraqueitis Bovino Infeccioso (IBR) y Vulvovaginitis Pustular Infecciosa (IPV) en hembras y Balanopostitis Pustular Infeccioso (IPB) en machos.
Las manifestaciones clínicas de la circulación del Herpesvirus Bovino-1 en un rebaño dependen de la virulencia de la cepa predominante. Cuando cepas virulentas circulan, la morbilidad es de hasta 100% en un rebaño ingenuo. De lo contrario la morbilidad es de aproximadamente 20%. La mortalidad varía entre 0 y 10%.
Distribución
La distribución de la infección es mundial y ha sido diagnosticada en todos los países probados[1].
En años recientes, algunos países Europeos han podido erradicar la infección mediante a la aplicación de una política de sacrificio estricta, por ejemplo Dinamarca, Suecia, Finlandia, Suiza y Austria. [2] Otros países han implementado programas de control parecidos.
La infección es endémica en el Reino Unido.
El Herpesvirus Bovino-1 se transmite por secreciones nasales o genitales. La transmisión es en forma directa, de un animal a otro, por via respiratoria o reproductiva. La transmissión indirecta tambien se puede ocurrir a través de fómites. La transmisión vertical ocurre en vacas, cuando el virus infecta al feto a traves de la placenta.
En un rebaño la circulación de Herpesvirus Bovino-1 se inicia por la reactivación del virus y la re-excreción por animales con infecciones latentes que ya está presente, o más a menudo por la introducción de un animal infectado de forma aguda o de latente.
La transmisión entre rebaños es un riesgo importante de la circulación del Herpesvirus Bovino-1. La transmisión aérea de Herpesvirus Bovino ha sido demostrado por distancias cortas y puede proporcionar una explicación por la transmisión entre rebaños.
Razas Más Afectadas
Los huéspedes naturales son las especies bovinas. Herpesvirus Bovino-1 tiene una especificidad de especie estrecho. Las especies susceptibles realmente se puede definir como animales en los que Herpesvirus Bovino-1 se puede establecer una infección latente, como el ganado y las ovejas [3], las cabras [4] y otras especies pertenecientes a la subfamilia de los Bóvidos.
Los brotes son más frecuentes en el ganado entre 6 y 18 meses de edad, aunque todas las edades del ganado son susceptibles. Los terneros suelen estar protegidos por los anticuerpos del calostro hasta los 3-4 meses de edad entonces la infección antes esta edad es poco común.
Signos Clínicos
Signs of IBR vary with each particular strain but classically include coughing, serous nasal discharge, tachypnoea and dyspnoea. There may also be signs of increased lacrimation and a marked conjunctivitis. Coughing and sneezing are observed. The virus is excreted in the nasal secretions as early as 24 hours after infection. After an incubation period of 2 to 4 days, nasal secretions are more profuse and evolve from sero-mucous to mucopurulent discharge. The animal will usually be pyrexic and be weak, dull and depressed. It will usually have a reduced appetite and may show signs of weight loss. If in milk, the yield will be decreased. Young animals show ptyalism. In endemic dairy herds, it is not uncommon for animals to present with milk drop with or without pyrexia.
IBR may cause abortion if susceptible cows or heifers are infected during pregnancy. Abortion is usually observed between 4 and 8 months of gestation. Early embryonic death can also occur. Abortion is a consequence of respiratory infection of pregnant cows. Viraemia allows the virus to enter the uterine artery and cross the placenta. Abortion is due to a lytic infection of the fetus. All internal organs of the fetus, especially the liver and renal cortex, show foci of necrosis. A generalized multifocal necrosis is diagnosed.[5] Infection of cows during the last trimester of gestation can lead to neonatal death, and death of weak calves can occur during the first 2 weeks of life.[6]
Latent infection can occur, the viral cells residing in the trigeminal nerve, and infected cattle can then shed the virus intermittently particularly after stressful episodes. Other animals recover within 14 days, due to the rise of the specific immune response. Becoming latent is a common sequelae to infection and in terms of control, all animals on an endemic farm should be considered as potential latent carriers irrespective of their antibody status. Some highly virulent BHV-1 strains induce a high mortality rate.
In IPV, signs will include pain of the vagina or penis and erythrematous swelling of this region, reluctance to mate, mucous discharge from the vulva or penis and signs of ulcers, vesicles and erosions on the penis or vagina. The animal may urinate frequently and have an elevated tail.
Los signos de IBR varían con cada cepa en particular, pero clásicamente incluyen tos, descarga nasal serosa, taquipnea y disnea . También puede haber signos de aumento de lagrimeo y conjuntivitis marcados . Tos y los estornudos se observan. El virus se excreta en las secreciones nasales tan pronto como 24 horas después de la infección. Después de un período de incubación de 2 a 4 días, las secreciones nasales son más profusos y evolucionar a partir de sero-mucosa a secreción mucopurulenta . El animal se pyrexic y ser débil, aburrido y deprimido. Por lo general, tendrá una reducción del apetito y puede mostrar signos de pérdida de peso. Si en la leche, el rendimiento será menor. Los animales jóvenes muestran ptialismo. En los hatos lecheros endémicas, no es raro que los animales que presentan caída de la leche , con o sin fiebre. IBR puede causar aborto si las vacas o novillas susceptibles se infectan durante el embarazo. El aborto es generalmente observada entre 4 y 8 meses de gestación . Muerte embrionaria temprana también puede ocurrir. El aborto es una consecuencia de la infección respiratoria de las vacas preñadas . Viremia permite que el virus para entrar en la arteria uterina y la placenta. El aborto es debido a una infección lítica del feto. Todos los órganos internos del feto, especialmente en el hígado y corteza renal , muestran focos de necrosis. Una necrosis multifocal generalizada se diagnostica. [5] La infección de las vacas durante el último trimestre de gestación puede conducir a la muerte neonatal , y la muerte de terneros débiles pueden ocurrir durante las 2 primeras semanas de vida. [6] La infección latente puede ocurrir , las células virales que residen en el nervio trigémino , y ganado infectados pueden excretar el virus de forma intermitente sobre todo después de episodios de estrés. Otros animales se recuperan en 14 días, debido al aumento de la respuesta inmune específica. Convertirse en latente es una secuela común a la infección y en términos de control, todos los animales en una granja endémicas deben ser considerados como portadores latentes potencial independientemente de su estado de anticuerpos. Algunos altamente virulentas cepas de BHV-1 induce una alta tasa de mortalidad. En IPV, los signos se incluyen el dolor de la vagina o el pene y erythrematous inflamación de esta región, la renuencia a su compañero, secreción mucosa de la vulva o el pene y los signos de úlceras, vesículas y erosiones en el pene o la vagina. El animal puede orinar con frecuencia y tienen una cola elevada.
Patología
Ulceración y enrojecimiento son visibles en la mucosa nasal, en la faringe y la traquea. Lesiones están normalmente restringidas a la vía aérea superior. Bronquitis y neumonía también pueden ser observados, pero usualmente como consecuencia de infecciones bacterianas secundarias. Mucosas respiratorias son enrojecidas y edematosas, con focos de úlceras y algunos lesiones hemorrágicos.[7] [1]
Vulvovaginitis pustular infecciosa (IPV) y balanopostitis pustular infeccioso (IPB) es una inflamación pustular causando enrojecimiento y edema de la mucosa genital con vesículas y pústulas evolucionando a úlceras.
Diagnóstico
Un brote de enfermedad respiratoria aguda con abundante secreción nasal, fiebre y depresión sugiere la rinotraqueitis infecciosa bovina (IBR). En un rebaño ingenuo, la epidemia avanza rápidamente y los síntomas respiratorios son asociados con las muertes neonatales y abortos entre los 4 y 8 meses de embarazo. Cepas hipovirulentas pueden circular sin sintomatología. Se sospecha la forma vulvovaginitis pustulosa infecciosa (IPV) si los animales tienen lesiones vesiculares y pustulosas de la mucosa genital y no hay evidencia de transmisión venérea.
En el laboratorio, se puede aislar el virus de hisopos nasales o vaginales, o de tejido triturado. El ADN de Herpesvirus Bovino-1 de también puede ser detectado por reacción en cadena de la polimerasa (PCR). En un animal individual, técnicas serológicas de pares puede ser útil con una respuesta de anticuerpo visto dos semanas después de los signos clínicos.
También se ha desarrollado ELISAs para detectar anticuerpos contra el Herpesvirus Bovino-1 en la leche a granel, o en muestras de leche de vacas individuales. ELISAs de leche funcionan bien en comparación con el estándar ELISA de suero.
En los programas de control de la rinotraqueitis infecciosa bovina (IBR), el diagnóstico serológico tiene como objetivo identificar los animales con una infección latente. Sin embargo, algunos animales son portadores seronegativos latentes (SNLC), es decir, están infectadas de forma latente con el Herpesvirus Bovino-1 sin anticuerpos detectables.[8]
Tratamiento
El tratamiento que usualmente se requiere es de apoyo para esta enfermedad. Si la infección bacteriana secundaria está presente, se puede utilizar antibióticos como tratamiento.
Se recomienda los medicamentos antiinflamatorios para el tratamiento de la fiebre y para aliviar el dolor.
Control
Hay una vacuna disponible para el control y esta muy utilizada. Vacunas inactivadas y atenuadas vivas estén disponibles. El esquema de vacunación consta de dos vacunas a un intervalo de 3 semanas para las vacunas inactivadas, a partir de 3-4 meses para evitar la interferencia con los anticuerpos del calostro. Las vacunas vivas atenuadas se administran una o dos veces, dependiendo del tipo de vacuna. Duración de la inmunidad es de seis meses a un año. Se recomienda la vacunación de los terneros jóvenes para prevenir los signos clínicos. La vacunación de los terneros de menos de 3 meses de edad se puede lograr mediante la administración intranasal de una vacuna atenuada. Esta ruta es mejor para superar la interferencia debida a la inmunidad materna. Las vacunas deben proteger el ganado clínicamente en el caso de infección y reducir de manera significativa el derramamiento del virus. La vacunación de los animales con una infección latente puede reducir el nivel de excreción de este grupo. Vacunas marcadoras también están disponibles y recomendidas. Se basan en mutantes con la glicoproteína E (gE) eliminados, con anticuerpos detectables que presentan al antígeno gE marcador en los individuos vacunados y indica el tipo de infección viral salvaje.
Referencias
- ↑ 1,0 1,1 Straub, O. C (1990) Infectious bovine rhinotracheitis virus. Virus infections of ruminants, 71-108;10
- ↑ OIE (2005) Terrestrial Animal Health Code. Paris, France: Office International Des Epizooties, Chapter 2.3.5.
- ↑ Thiry, E et al., (2001). Risk evaluation of cross-infection of cattle with ruminant alphaherpesviruses related to bovine herpesvirus type 1. In: Körber R, ed. Tagungsbeiträge, 3. Internationales Symposium zur BHV-1- und BVD-Bekämpfung, Stendal, in press
- ↑ Six, A., Banks, M., Engels, M., Bascunana, C. R., Ackermann, M (2001) Latency and reactivation of bovine herpesvirus 1 (BHV-1) in goats and of caprine herpesvirus 1 (CapHV-1) in calves. Archives of Virology, 146(7):1325-1335; 38
- ↑ Smith, K. C (1997) Herpesviral abortion in domestic animals. Vet Journal, 153(3):253-268
- ↑ Thiry, E., Detilleux, P., Vriese, A., Pirak, M., Pastoret, P-P (1984) Infectious bovine rhinotracheitis in the neonatal period: a review and a case report. Annales de Médecine Vétérinaire, 128(1):33-40; 25
- ↑ Gibbs, E. P. J., Rweyemamu, M. M (1977) Bovine herpesviruses. Part I. Bovine herpesvirus 1. Veterinary Bulletin', 47:317-343.
- ↑ Lemaire, M., Meyer, G., Baranowski, E., Schynts, F., Wellemans, G., Kerkhofs, P., Thiry, E (2000) Effects of bovine herpesvirus type 1 infection in calves with maternal antibodies on immune response and virus latency. J Clin Microbiol, 38:1885-1894
Kaashoek, M. J., Moerman, A., Madic, J., Rijsewijk, F. A. M., Quak, J., Gielkens, A. L. J., Oirschot, J. Tvan (1994) A conventionally attenuated glycoprotein E-negative strain of bovine herpesvirus type 1 is an efficacious and safe vaccine. Vaccine, 12(5):439-444; 19
Karstad, L., Jessett, D. M., Otema, J. C., Drevemo, S (1974) Vulvovaginitis in wildebeest caused by the virus of infectious bovine rhinotracheitis J Wildlife Diseases, 10:392-396.
Lemaire, M., Meyer, G., Baranowski, E., Schynts, F., Wellemans, G., Kerkhofs, P., Thiry, E (2000) Production of bovine herpesvirus type 1-seronegative latent carriers by administration of a live-attenuated vaccine in passively immunized calves. J Clin Microbiol, 38(11):4233-4238; 43 ref.
Mars, M. H et al (2000) Airborne transmission of bovine herpesvirus 1 infections in calves under field conditions. Veterinary Microbiology, 76(1):1-13.
Mars, M. H., Bruschke, C. J. M., Oirschot, J. Tvan (199) Airborne transmission of BHV 1 [bovine herpesvirus 1], BRSV [bovine respiratory virus], and BVDV [bovine virus diarrhoea virus] among cattle is possible under experimental conditions. Veterinary Microbiology, 66(3):197-207; 33
OIE, 2004. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Paris, France: World Organisation for Animal Health. http://www.oie.int/eng/normes/mmanual/A_summry.htm. (accessed April 2011)
OIE, 2009. World Animal Health Information Database - Version: 1.4. World Animal Health Information Database. Paris, France: World Organisation for Animal Health.
Van, Oirschot, J. T., Kaashoek, M. J., Rijsewijk, F. A. M (1996) Advances in the development and evaluation of bovine herpesvirus 1 vaccines. Veterinary Microbiol, 53(1/2):43-54; 60
Wyler, R., Engels, M., Schwyzer, M (1989) Infectious Bovine Rhinotracheitis/Vulvovaginitis (BHV-1). In: Wittmann G, ed. Herpesvirus Diseases of Cattle, Horse and Pigs. Massachusetts, USA: Kluwer Academic Publishers, 1-72.
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Este artículo fue originalmente de The Animal Health & Production Compendium (AHPC) publicado en el web por CABI. Hoja(s) de datos utilizados: bovine herpesvirus 1 and bovine herpesvirus 1 infections el 3 April 2011 |
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Este artículo ha sido revisado por el experto Nick Lyons MA VetMB CertCHP MRCVS Fecha de revisión: 31 August 2011 |